用电热恒温培养箱进行水质粪大肠菌群的测定

2019-04-09 13:18 0

电热恒温培养箱进行水质粪大肠菌群的测定
测定方法一般分为两种,一种是多管发酵法,一种是滤膜法。下面给大家介绍一下实验步骤:
滤膜法
水样量的选择:水样量的选择根据细菌受检验的特征和水样中预测的细菌密度而定。如未知水样中粪大肠菌的密度,就应按下表所列体积过滤水样,以得知水样的粪大肠杆菌密度。先估计出适合在滤膜上计数所应使用的体积,然后再取这个体积的1/10和10倍,分别过滤。理想的水样体积是一片滤膜上生长20~60个粪大肠菌群菌落,总菌落数不得超过200个。
滤膜及滤器的灭菌:将滤膜放入烧杯中,加入蒸馏水,置于沸水浴中煮沸灭菌三次,每次15min。前两次煮沸后需更换水洗涤2~3次,以除去残留溶剂。也可用121°C灭菌10min,10min一到,迅速将蒸汽放出,这样可以尽量减少滤膜上凝集的水分。滤器、接液瓶和垫圈分别用纸包好,在使用前先经121°C高压蒸汽灭菌30min。滤器灭菌也可用点燃的酒精棉球火焰灭菌。
过滤:用无菌镊子夹取灭菌滤膜边缘,将粗糙面向上,贴放在已灭菌的滤床上,稳妥地固定好滤器。将适量的水样注入滤器中,加盖,开动真空泵即可抽滤除菌。
培养:使用M−FC培养基。培养基含或不含琼脂,不含琼脂的培养基使用已用M-FC培养基饱和的无菌吸收垫。将滤过水样的滤膜置于琼脂或吸收垫表面。将培养皿紧密盖好后,置于能准确恒温于44.5°C±0.5°C的电热恒温培养箱或恒温水浴中,经24h±2h培养。若用恒温水浴培养,则需用防水胶带贴封每个平皿,将培养皿成叠封入防水塑料袋或容器内,浸没在44.5°C±0.5°C恒温水浴中。在培养时间内,装培养皿的塑料袋必须用重物坠于水面之下,以保持所需的严格温度。所有已制备的培养物都应在过滤后30min内浸入水浴内。
多管发酵法
水样接种量将水样充分混匀后,根据水样污染的程度确定水样接种量。每个样品至少用三个不同的水样量接种。同一接种水样量要有五管。相对未受污染的水样接种量为10mL、1mL、0.1mL。受污染水样接种量根据污染程度接种1mL、0.1mL、0.01mL或0.1mL、0.01mL、0.001mL等。
接种体积为10mL,则试管内应装有三倍浓度乳糖蛋白胨培养液5mL;如接种量为1mL或少于1mL,则可接种于普通浓度的乳糖蛋白胨培养液10mL中。
初发酵试验    将水样分别接种到盛有乳糖蛋白胨培养液的发酵管中。在37°C±0.5°C电热恒温培养箱中培养24h±2h。产酸和产气的发酵管表明试验阳性。如在倒管内产气不明显,可轻拍试管,有小气泡升起的为阳性。
复发酵试验    轻微振荡初发酵试验阳性结果的发酵管,用3mm接种环或灭菌棒将培养物转接到EC培养液中。在44.5°C±0.5°C温度下培养24h±2h(水浴箱的水面应高于试管中培养基液面)。接种后所有发酵管必须在30min内放进水浴中。培养后立即观察,发酵管产气则证实为粪大肠菌群阳性
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